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除草剂是高浓度生长激素

2026-01-12 投稿人 : 懂农资网 围观 : 519 次

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除草剂是高浓度生长激素
1、除草剂含有2.4,d能喷果园鸣?

2,4-D在农业生产上有两种用法,一种是作为植物生长调节剂的生长剂,另一种是除草剂。在果树上一般是低浓度使伤口愈合、能拮抗脱落酸减少果树落果现象、促进果枝生长。

2,4-D只能低浓度在果树上使用,因为在果树上残留时间长,浓度过高,会影响翌年的花芽分化,新芽的形成,新枝梢的生长,新梢枝叶变成畸形怪状而又细小。

通常用在风灾、冰雹、低温冻伤等造成果树重伤,以及果树僵化生长不良和落花落果时,低浓度使用。建议果农在一般情况下,尽量不要使用该药。

2、农民乐747除草剂说明书?

农民乐747是美国孟山都公司最新研制开发的-种非选择性芽后茎叶处理为主的灭生性内吸除草剂,是4l%农达除草剂的升级换代产品。经我地大面积应f证明,此药具有f量少,使f方法简单,除草效果显着的特点,得到了广大农民的认可,并得到迅速推广。

l、作f特点农民乐747含有74.7%的原药胺盐、2O%的助剂等,为淡黄至浅**颗粒剂。该剂遇水后迅速溶解。药剂喷施后通过植物茎叶吸收传导到体内及根部,并对多年生宿根性染草根部具有极强的破坏カ,抑制植物蛋白质的合成,导致植物各部位的组织坏死,使地上部表现枯萎死亡。此药具有广泛的适应性,既可f于幼林抚育和林豆间作田除草,ㄡ可f于荒坡、林地更新地,也可f于田埂、公路及园林绿化卫生除草,也可f于棉花、甘蔗田、玉米、大豆、水稻等作物以及蔬菜作物等除草。对于各种-年生和多年生杂草均有良好的防除作f,即使耐药性强的杂草,通过加大使f剂量也可彻底杀死。农民乐747安全高效无残留,药剂接触到土壤之后就迅速与土壤中的钙、铝、铁等金属离子结合并失去活性,随后很快被土壤微生物分解为无害物质,没有土壤残留活性,不妨碍种子或块茎萌发及正常生长。

2、使f技术农民乐747只通过植物的绿色部位吸收,并传导到其它部位。所以,在使f时应根据杂草种类和大小及种植作物种类选择使f方法和剂量。以-年生和多年生杂草为主的地块,每亩f74.7%浓度药剂lOO-l5O克,可防除稗草、看麦娘、牛筋草、马唐、藜、鸭跖草等杂草。以多年生宿根性杂草为主的田块,每亩f2OO-25O克,可防除芦苇、刺ㄦ菜、狗牙根及榛材、山梨、山楂等小灌森和小乔W。在配制药液时,应先f少量水将药剂溶解后再加水稀释。喷药时耍カ求均匀、细致,使杂草均匀接触到药液,以利杂草对药液的吸收,每亩对水量以2O-3O千克为宜。

在f药时也应注意以下F点:①应选择晴天无风时f药,以避免对邻近作物因飘移造成药害。②对药时应避免f泥水或脏水稀释,以免降低药效。③施药后4小时内下中雨或大雨应适当补喷。④喷过此药的喷雾器应彻底清洗,以免再次f药时对其它作物产生药害。

除草剂是高浓度生长激素
3、对作物没抑制的杀菌剂?

苯骈咪唑杀菌剂是杀菌作用,而不抑制作物生长。以有杀菌活性的苯并咪唑环为母体的一类有机杀菌剂,几乎所有这类化合物均显示内吸杀菌活性,其中代表性化合物有苯菌灵、多菌灵、青菌灵、硫菌灵、甲基硫菌灵(在植物体内或在植物近旁经代谢活化,变成甲基苯并咪唑-2-氨基甲酸酯,即多菌灵,或近似于它们的化合物,从而表现出杀菌活性)以及噻菌灵、麦穗宁、唑菌灵(被植物吸收后,传导至感染部位,而呈现杀菌作用)等。

对植物有抑制生长作用是生长调节剂与除草剂和一些植物激素,生长调节剂与除草剂都对浓度要求非常严格。比如植物激素脱落酸,脱落酸指能引起芽休眠、叶子脱落和抑制细胞生长等生理作用的植物激素。

4、1升除草剂等于多少公斤?

1升除草剂是1公斤。因为升与斤的重量是

等同的。1升=1000毫升,1斤=500毫升。

除草剂又称杀草剂。能杀死杂草或有害植物,而不影响农作物正常生长的化学药剂。可用于防治农田杂草或杀灭非农耕地的杂草或灌木。按其作用特点可分为选择性除草剂和灭生性除草剂。选择性除草剂指在使用一定剂量和浓度的范围内,可有选择性地杀死某些种类的植物,而对其他种类植物无害

5、苄乙除草剂对水稻会有药害吗?

在推荐剂量和使用时期下,苄乙除草剂对水稻是安全的,但是在育秧田、直播田、留种田、漏水田、病弱苗田等特殊情况下,可能会对水稻产生药害。使用苄乙除草剂时需要注意以下几点:

在正确的使用时期使用,不要在错误的时期使用。

除草剂是高浓度生长激素

播种前要进行土壤处理,以消除土壤中的杂草种子。

慎用于水稻鱼虾套养稻田。

不要在直播田和留种田使用,也不要在漏水田和病弱苗田使用。

如果出现药害,需要及时采取补救措施,例如喷施清水冲洗受药害的部位,并喷施植物生长调节剂等。

在使用苄乙除草剂时,需要根据具体情况选择合适的剂量和使用时期,并严格按照说明书的要求使用,以避免对水稻产生药害。如果出现药害,需要及时采取补救措施,以减少损失。

拓展好文:浙大团队解析植物向光性奥秘

  生长素是最重要的植物激素,主要合成部位是芽、幼嫩的叶和发育中的种子,通过极性运输分配到植物各处组织,调控生长发育——低浓度生长素促进生长,高浓度生长素抑制生长。生长素的极性运输对生长素的分配至关重要。那么,生长素极性运输是如何实现的呢?

  近日,浙江大学医学院生物物理系长聘副教授/附属第四**双聘教授郭江涛指导的浙江大学-湖北大**合研究团队阐明了生长素转运蛋白PIN介导生长素极性运输的分子机制。这项工作于北京时间8月2日刊登在国际顶级期刊《自然》上。该成果作为植物生长素极性运输研究的重大突破,解决了植物向性这一个百年科学难题中的关键一环,为人们进一步调控生长素极性运输奠定了基础。生长素及其转运蛋白PIN的发现过程

除草剂是高浓度生长激素

  19世纪末,英国著名生物学家、进化论的奠基人达尔文在研究植物向性运动时,发现植物胚芽鞘的尖端受单侧光**后,向下面的伸长区传递了某种“影响”,造成伸长区背光面比向光面生长快,胚芽鞘出现向光性弯曲。这就是中学生物教科书上被大家广为熟知的达尔文向光性实验。1928年,荷兰科学家温特证实胚芽鞘弯曲生长是由一类化学物质引起的,并命名为生长素(auxin)。1946年,科学家从高等植物中首次分离出生长素,其主要成分为吲哚乙酸IAA。

  后续研究发现,生长素不仅与植物向光性相关,还与植物向地性(向重力性)、向化性(包括向肥性)等相关。植物受单向的环境**而呈现的定向反应统称为向性(tropi**)。这种向性主要是由生长素在植物体内极性分配造成的。 生长素的极性运输在这一过程中就变得非常关键。

  生长素极性运输主要依赖于三种定位于细胞膜上的转运蛋白:AUX/LAX家族蛋白、PIN家族蛋白和ABCB家族蛋白,其中生长素外排蛋白PIN起最主要作用。PIN突变体通常表现出相应组织生长素极性运输缺陷的表型,如向光性、向重力性受损等。 由于缺乏结构信息,人们对PIN蛋白如何介导生长素外排了解甚少。

  PIN如何识别和转运生长素?

  浙大研究团队利用单颗粒冷冻电镜技术,解析了拟南芥PIN3(AtPIN3)在未结合配体(AtPIN3apo)和结合IAA(At-PIN3IAA)两种状态的高分辨率结构。通过结构解析发现AtPIN3以二聚体形式存在,每个亚基包含10个跨膜螺旋(TM1–10),TM1–5和TM6–10组成反向重复结构。AtPIN3apo与AtPIN3IAA结构类似,且均为向内开放状态。AtPIN3单体由支架结构域(scaffolddomain)和转运结构域(transportdomain)组成。在At-PIN3IAA结构中,IAA结合在支架结构域和转运结构域之间的内向开放口袋中,与多个保守的氨基酸发生氢键和疏水相互作用。

  为了确定IAA与AtPIN3的结合模式,研究团队建立了体外放射性3H-IAA转运体系。相比于野生型AtPIN3,结合位点突变的3H-IAA外排活性显著降低。同时通过表面等离子体共振实验,测定野生型AtPIN3与突变体对IAA的解离常数(KD)。实验表明,野生型AtPIN3与突变体相比对IAA有更高的亲和力。 本研究同时结合了分子动力学模拟和结构比较等方法对IAA的结合模式进行多重验证,阐明了AtPIN3对IAA的识别与转运机制。

  NPA如何抑制生长素极性运输?

除草剂是高浓度生长激素

  除草剂NPA(N-1-naphthylphtha-lamicacid)是一种被广泛研究的生长素极性运输抑制剂。NPA处理的植株几乎跟生长素转运蛋白突变体植株pin1的表型一模一样。长期以来,人们对NPA的作用靶点和作用机制一直存在争议。

  该研究团队进一步解析了AtPIN3与抑制剂NPA复合物结构(AtPIN3NPA)。研究人员同样通过体外放射性3H-IAA转运实验和表面等离子体共振实验验证了NPA的结合位点。比较AtPIN3IAA和AtPIN3NPA发现,抑制剂NPA与底物IAA的结合位点重叠。 NPA为竞争性抑制剂,直接占据了PIN中生长素的结合位点,抑制了转运过程中PIN的潜在构象变化。

  基于上述结构和活性分析,研究团队提出了PIN介导生长素转运和NPA抑制生长素极性运输的分子机制。PIN处于内向开放状态时,细胞内的IAA结合在内向开放口袋中,引起PIN二体由内向开放状态向外向开放状态转换,IAA被释放至细胞外。抑制剂NPA结合在底物结合位点,阻碍了IAA的结合,同时抑制转运过程中PIN的潜在构象变化,起到抑制生长素极性运输的效果。

  该研究解析了3个AtPIN3高分辨率电镜结构,明确了底物IAA和抑制剂NPA与AtPIN3的结合模式。这项工作不仅阐明了人们长久以来期待的PIN介导生长素转运的分子机制,而且将有助于进行作物改良,指导新型PIN抑制剂的开发。这些抑制剂既可作为生长素极性运输机理研究的工具,也可作为农业除草剂,具有广泛的应用前景。

  该工作是由浙江大学、湖北大学和天津大学的多个实验室联合完成。浙江大学医学院郭江涛组博士后苏楠楠、杨帆组博士生竺爱琴和湖北大学生命科学学院吴姗组博士生陶鑫为论文的共同第一作者,郭江涛、吴姗和杨帆为共同通讯作者。参与这项工作的还有浙江大学生命科学学院郑绍建教授和丁忠杰研究员、浙江大学冷冻电镜中心常圣海老师、浙江大学农业与生物技术学院郭逸蓉老师和张素芬老师、天津大学生命科学学院叶升教授和湖北大学生命科学学院马立新教授。

  (图文由课题组提供)